Estrellas, erizos y pepinos de mar · Arbaciidae
Arbacia nigra
Arbacia nigra (Molina, 1782)
- Registro Peruano de Especies Marinas
- Incluida en PeRMS (IMARPE)

Ficha
Resumen
Arbacia nigra es un erizo de mar regular de roca, nativo de la costa pacífica de Sudamérica desde el norte del Perú hasta el sur de Chile [1]. Se describió en 1782 como Echinus niger, durante mucho tiempo se conoció como Tetrapygus niger y desde 2023 se coloca en Arbacia, como especie hermana de Arbacia dufresnii [2],[3]. Es un herbívoro que se alimenta sobre todo de algas pardas y limita la colonización de la roca por mejillones [4],[5].
Etimología
Molina describió la especie en 1782 como Echinus niger [3]. Agassiz erigió en 1841 el género Tetrapygus para esta única especie, y en 1846 A. Agassiz propuso ya la combinación Arbacia nigra [2]. Con datos mitocondriales (COI), nucleares (28S) y morfológicos, Courville y colaboradores devolvieron la especie a Arbacia en 2023, y el registro WoRMS trata Tetrapygus niger como combinación superada [2],[3].
Distribución y hábitat
Habita la costa pacífica de Sudamérica, del norte del Perú al sur de Chile, sobre roca y estructuras artificiales en hábitats rocosos, sobre todo donde hay bosques de algas pardas y fuerte oleaje [1]. Una revisión sitúa su rango desde el intermareal bajo hasta 10 m de profundidad, con juveniles principalmente en grietas a menos de 2,5 m [1].
En Chile central, la parte más somera del submareal y el borde somero del bosque de Lessonia trabeculata funcionaron como zonas de reclutamiento entre marzo y noviembre de 1990, y los juveniles de menos de 24 mm de diámetro de testa se asociaron con grietas [6]. Fuera del bosque los individuos aparecieron agregados, y la abundancia disminuyó hacia el centro del bosque de algas [6].
Biología
Es un herbívoro generalista cuya dieta incluye sobre todo algas pardas, además de algas filamentosas, coralinas incrustantes, algas a la deriva, reclutas de mejillón y crustáceos [1]. En el intermareal de Chile central, Lessonia spp. constituyó el 68% de la dieta, y el desarrollo de las gónadas dependió de la disponibilidad de algas varadas [4]. En la bahía de Ancón, en el Perú, el análisis de contenido intestinal e isótopos mostró que consume también macroalgas bentónicas [5].
La larva es un equinopluteus de forma poco común, que en cultivo a 14–18 °C pasó entre 94 y 120 días en el plancton y alcanzó más de 4,5 mm [7]. Cerca del 40% de las larvas llegó al estadio juvenil, y la metamorfosis completa duró de 4 a 6 días [7]. En cultivos controlados el desarrollo temprano depende de la temperatura: hasta la blástula temprana tardó 14 horas a 15 °C, 45 horas a 10 °C y 164 horas a 5 °C [8].
Ecología
En el intermareal bajo de la bahía de Ancón, en el centro del Perú, experimentos de inclusión y exclusión mostraron que esta especie impide que los organismos sésiles colonicen el sustrato, incluido el mejillón dominante Semimytilus algosus [5]. Los autores proponen que, al limitar a los mejillones, puede reducir la diversidad de especies asociadas, y que al mantener roca desnuda beneficia a otros ramoneadores [5].
Una revisión la describe como el erizo más abundante en el Perú y en Chile, con densidades de hasta 85 individuos por m2, y señala que a esas densidades pueden formarse blanquizales donde el crecimiento de las algas queda inhibido [1]. En Chile, algunos individuos viven sobre superficies elevadas y evitan así a las estrellas de mar depredadoras Heliaster helianthus y Meyenaster gelatinosus: en los ensayos, el erizo tardó 48% menos en romper el contacto sobre superficies elevadas que en el fondo [9]. Los experimentos señalan a Meyenaster gelatinosus como una amenaza mayor que Heliaster helianthus [9].
Importancia sanitaria, toxicológica y química
No es consejo médico. Ante una picadura, una intoxicación o una alergia, busca atención médica.
Entre 77 individuos de la costa central peruana, muestreados en Pucusana, La Punta y Ventanilla se recuperaron 905 partículas tipo microplástico, es decir, 11,75 por individuo, sobre todo fragmentos y fibras amarillas, azules y rojas [10]. En un estudio anterior con la especie, el tubo digestivo contenía en promedio 3,22 microplásticos por individuo, con un rango de 1 a 5, y las fibras sumaban 75,9% [11].
En Caleta Horcón, una zona industrial de Chile, las gónadas del erizo alimentado con algas cultivadas allí acumularon metales (Cu, As, Cd y Pb) en concentraciones entre 5 y 798 veces mayores que las del alga [12].
Importancia humana
Los embriones, larvas y espermatozoides de esta especie se han usado como material de laboratorio: una investigación empleó los núcleos espermáticos para medir la peroxidación de lípidos por estrés oxidativo con peróxido de hidrógeno [13], y otra describió su desarrollo embrionario a 5, 10 y 15 °C [8]. Fuera de su área nativa, un registro de 2007 en una piscifactoría de Sudáfrica llevó a incluirla entre las especies introducidas, pero una nueva búsqueda en septiembre de 2014 no la halló en ningún sitio y se recomendó retirarla de las listas de especies invasoras [1].
Dónde verla en el Perú
La literatura peruana la documenta en el intermareal bajo rocoso de la bahía de Ancón, a 11°46′S, donde convive con el caracol Tegula atra [5]. Un estudio publicado en 2026 reunió ejemplares en Pucusana, La Punta y Ventanilla, en el litoral central [10]. Una revisión indica que ocupa desde el intermareal bajo hasta unos 10 m de profundidad, y que es más frecuente donde hay bosques de algas y fuerte oleaje [1].
Referencias (13)
- Mabin, C.A., Wilson, J.R.U., Robinson, T.B. (2015). The Chilean black urchin, Tetrapygus niger (Molina, 1782) in South Africa: gone but not forgotten. BioInvasions Records 4, 261-264. doi:10.3391/bir.2015.4.4.05 (consultado el 2026-10-25)
- Courville, E., Poulin, E., Saucède, T. et al. (2023). Taxonomic reassessment of Tetrapygus niger (Arbacioida, Echinoidea): molecular and morphological evidence support its placement in Arbacia. Zootaxa, 249-261. doi:10.11646/zootaxa.5375.2.6 (consultado el 2026-10-25)
- WoRMS Editorial Board (2026). Arbacia nigra (Molina, 1782). World Register of Marine Species. https://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=569287 (consultado el 2026-10-25)
- Rodríguez, S.R. (2003). Consumption of drift kelp by intertidal populations of the sea urchin Tetrapygus niger on the central Chilean coast: possible consequences at different ecological levels. Marine Ecology Progress Series 251, 141-151. doi:10.3354/meps251141 (consultado el 2026-10-25)
- Hidalgo, F.J., Firstater, F.N., Lomovasky, B.J. (2013). Grazing effects of the sea urchin Tetrapygus niger and the snail Tegula atra on a rocky shore of central Peru. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom 93, 2059-2066. doi:10.1017/S0025315413000994 (consultado el 2026-10-25)
- Rodriguez, S.R., Ojeda, F.P. (1993). Distribution patterns of Tetrapygus niger (Echinodermata: Echinoidea) off the central Chilean coast. Marine Ecology Progress Series 101, 157-162. doi:10.3354/meps101157 (consultado el 2026-10-25)
- Fuentes, I., Barros, C. (2000). Larval development and metamorphosis of cultured Tetrapygus niger (Echinodermata Echinoidea): an uncommon form of echinoplutei. Invertebrate Reproduction & Development 37, 201-209. doi:10.1080/07924259.2000.9652420 (consultado el 2026-10-25)
- Olaechea, P., Panéz, J.J., Gonzáles-Figueroa, H. (2017). Desarrollo embrionario de Tetrapygus niger (Molina, 1782) “erizo negro” en diferentes temperaturas. Biotempo 6, 27-31. doi:10.31381/biotempo.v6i0.879 (consultado el 2026-10-25)
- Urriago, J.D., Himmelman, J.H., Gaymer, C.F. (2012). Sea urchin Tetrapygus niger distribution on elevated surfaces represents a strategy for avoiding predatory sea stars. Marine Ecology Progress Series 444, 85-95. doi:10.3354/meps09396 (consultado el 2026-10-25)
- Iannacone Oliver, J.A., Obregón-Ruiz, V.A., Nuñez-Bolaños, F.A. (2026). Partículas tipo microplástico en el erizo negro Arbacia nigra (Molina, 1782) (Echinoidea: Arbaciidae) en tres playas de la costa central del Perú. Innovaciencia 14. doi:10.15649/2346075x.6414 (consultado el 2026-10-25)
- De-la-Torre, G.E., Dioses-Salinas, D.C., Huamantupa-Aybar, S. (2020). Preliminary observations of plastic debris in the gastrointestinal tract of sea urchin Tetrapygus niger. Brazilian Journal of Natural Sciences 3. doi:10.31415/bjns.v3i2.94 (consultado el 2026-10-25)
- Latorre-Padilla, N., Meynard, A., Rivas, J. (2021). Transfer of Pollutants from Macrocystis pyrifera to Tetrapygus niger in a Highly Impacted Coastal Zone of Chile. Toxics 9. doi:10.3390/toxics9100244 (consultado el 2026-10-25)
- Huerta Canales, D., Oré Sifuentes, R., Núñez Fonseca, M. (2000). El "erizo de mar" Tetrapygus niger como marcador biológico de estrés oxidativo. Revista Peruana de Biología 7, 198-201. doi:10.15381/rpb.v7i2.6827 (consultado el 2026-10-25)
Más imágenes
Dónde se ha registrado
- Relleno: con registros científicos o confirmada por curador
- Rayado: registro aislado
- Contorno punteado: sin registros científicos ni confirmación de un curador (una observación de ORKA no se dibuja aquí)
- Zona de transición tropical–fría
Registro aislado (1 registro)
- Mar frío del centro
Con registros científicos (17 registros)
- Mar frío del sur
Con registros científicos (18 registros)
Según registros de OBIS y GBIF con licencia abierta (CC0 o CC BY). Cómo se arma cada lista.
Especies emparentadas
Del mismo género (Arbacia).
Nombres y fuentes
Para saber más
Estado de conservación: sin dato (UICN). Taxonomía: PeRMS / WoRMS (CC BY 4.0).